Zabol-İran’da Kesilen Sığırlarda <i>Sarcocystis</i> Türlerinin Yol Açtığı Enfeksiyonlar Üzerine Histopatolojik İnceleme
PDF
Atıf
Paylaş
Talep
P: 182-186
Aralık 2019

Zabol-İran’da Kesilen Sığırlarda Sarcocystis Türlerinin Yol Açtığı Enfeksiyonlar Üzerine Histopatolojik İnceleme

Turkiye Parazitol Derg 2019;43(4):182-186
Bilgi mevcut değil.
Bilgi mevcut değil
Alındığı Tarih: 02.07.2019
Kabul Tarihi: 26.08.2019
Yayın Tarihi: 18.12.2019
PDF
Atıf
Paylaş
Talep

ÖZET

Amaç:

Sarkosistozis, dünya çapında yaygın bir dağılıma sahip ve çok çeşitli konakları olan önemli bir zoonotik protozoal hastalıktır. Bu çalışmanın amacı; Zabol-İran’da kesilen sığırlarda Sarkosistis spp. enfeksiyonunun yoğunluğunu belirlemek ve sarkosistis kistik lezyonlarının histopatolojik özellikleri göstermektir.

Yöntemler:

Nisan-Eylül 2018 tarihleri arasında kesilen 100 sığırın özofagus, kalp, diyafram, dil ve çiğneme kaslarından 500 doku örneği hazırlanmıştır. Tüm numuneler %10 nötr tamponlu formalin ile sabitlenmiştir ve tüm numunelere rutin doku işleme protokolü uygulanmıştır.

Bulgular:

Mikroskobik sonuçlar, örneklerin %92,2’sinde S. cruzi’nin ince duvarlı kistleri, %14’ünde kalın duvarlı Sarkosistis (S. hirsuta ve S. hominis) olduğunu, ancak makrokistin sadece bir sığırda görüldüğünü göstermiştir. İnce duvarlı kistlerin pozitiflik oranı kalp için %58,8, çiğneme kasları için %13,9, dil için %10,2, özofagus için %9,3 ve diyafram için %7,8 idi. S. hominis ve S. hirsuta’yı temsil edecek şekilde kalın duvarlı kistlerin pozitiflik oranı özofagus için %32,8, dil için %28,6, kalp için %22,9, çiğneme kasları için %15,7 ve diyafram için %0 idi. En çok enfekte olan doku kalp ve en az enfekte olan doku diyaframdı. İnce duvarlı kistler (S. cruzi) çoğunlukla kalpte bulundu ve diyaframda en az bulundu. Ancak, özofagusta kalın duvarlı kistler (S. hirsuta ve S. hominis) tespit edildi. Diyafram kasında kalın duvarlı kist bulunmadı.

Sonuç:

Zabol mezbahasında kesilen sığırlarda sarkosistosisin yüksek pozitiflik oranı, Sistan bölgesinin bu önemli paraziter hastalıkla ağır çevresel kontaminasyonunu ortaya çıkarmaktadır.

References

1
Hosseini SR, Shakerian A, Tahamtan N. Survey of Sarcocystis infection in slaughtered sheep in Isfahan, Qom and Shahre-Kord, Iran. J Anim Vet Adv 2012;11:2683-6.
2
Latif B, Vellayan S, Heo CC, Al-Bayati SM, Al-Amiry AM. High prevalence of muscular sarcocystosis in cattle and water buffaloes from Selangor, Malaysia. Trop Biomed 2013;30:699-705.
3
Fayer R, Esposito DH, Dubey JP. Human infections with Sarcocystis species. Clin Microbiol Rev 2015;28:295-311.
4
More G, Basso W, Bacigalupe D, Venturini MC, Venturini L. Diagnosis of Sarcocystis cruzi, Neospora caninum, and Toxoplasma gondii infections in cattle. J Parasitol Res 2008;102:671-5.
5
Mirzaei M, Rezaei, H. A survey on Sarcocystis spp. infection in cattle of Tabriz city, Iran. J Parasit Dis 2016;40:648-51.
6
Shekarforoush SS, Razavi SM, Abbasvali M. First detection of Sarcocystis hirsuta from cattle in Iran. IJVR 2013;14:155-7.
7
Dubey JP, Speer CA, Fayer R. Sarcocystosis of Animals and Man. 2nd ed. Boca Raton, Florida, USA: CRC Press; 1989.
8
Hamidinejat H, Raz Jalali MH, Nabavi L. Survey on Sarcocystis infection in slaughtered cattle in south-west of Iran, emphasized on evaluation of muscle squash in comparison with digestion method. J Anim Vet Adv 2010;9:1724-6.
9
Shekarforoush SS, Razavi SM, Ahmadi H, Sarihi K. Study on prevalence of Sarcocystis in slaughtered cattle in Shiraz. JVR 2004;59:33-7.
10
Bonyadian M, Meshki B. Study on infestation of cow carcasses to Sarcocyst spp in slaughtered cows in Shahrekord by impression method. Pajouhesh-va-Sazandegi 2001;19:14-8.
11
Nourollahi Fard SR, Asghari M, Nouri F. Survey of Sarcocystis infection in slaughtered cattle in Kerman, Iran. Trop Anim Health Prod 2009;41:1633-6.
12
Nourani H, Matin S, Nouri A, Azizi H. Prevalence of thin-walled Sarcocystis cruzi and thick-walled Sarcocystis hirsuta or Sarcocystis hominis from cattle in Iran. Trop Anim Health Prod 2010;42:1225-7.
13
Salehi M, Adinezade A, Mosazade A, Besharati R, Bahari P. The prevalence of Sarcocystis infection in sheep and cattle in Bojnurd, North Khorasan Province, Iran. J Zoonoses 2014;1:60-3.
14
Parandin F, Feizi F, Maghsood AH, Matini M, Roshan A, Fallah MA. Survey on Sarcocystis infection rate in slaughtered cattle and sheep by macroscopic inspection and pepsin digestion methods in Hamadan abattoir, Iran, 2014. Sci J Hamdan Univ Med Sci 2015;22:210-6.
15
Rahdar M, Kardooni T. Molecular identification of Sarcocystis spp. in sheep and cattle by PCR-RFLP from southwest of Iran. Jundishapur J Microbiol 2017;10:e12798.
16
Daryani A, Alaei R, Dehghan MH, Arab R, Sharif M, Ziaei H. Survey of Sarcocystis infection in slaughtered sheep and buffaloes in Ardabil, Iran. J Anim Vet Adv 2006;5:60-2.
17
Shekarforoush SS, Razavi SM, Dehghan SA, Sarihi K. Prevalence of Sarcocystis species in slaughtered goats in Shiraz, Iran. Vet Rec 2005;156:418-20.
18
Valinezhad A, Oryan A, Ahmadi N. Sarcocystis and its complications in camels (Camelus dromedarius) of eastern provinces of Iran. Korean J Parasitol 2008;46:229-34.
19
Farhang-Pajuh F, Yakhchali M, Mardani K. Molecular determination of abundance of infection with Sarcocystis species in slaughtered sheep of Urmia, Iran. Vet Res Forum 2014;5:181-6.
20
Ahmed AM, Elshraway NT, Youssef AI. Survey on Sarcocystis in bovine carcasses slaughtered at the municipal abattoir of El-Kharga, Egypt. Vet World 2016;9:1461-5.
21
Zangana IK, Hussein SN. Prevalence of Sarcocystis species (Sarcocystis ovicanis and Sarcocystis capricanis) in tongue muscle of sheep and goats in Duhok province, Kurdistan region, north Iraq. Sci J Koya Univ 2017;5:36-40.
22
Wouda W, Snoep JJ, Dubey JP. Eosinophilic myositis due to Sarcocystis hominis in a beef cow. J Comp Pathol 2006;135:249-53.
23
Silva NRS, Rodrigues RJD, Araujo FAP, Beck C, Olicheski AT. Detection of bovine Sarcocystis cruzi cysts in cardiac muscles: a new technique of concentration for diagnostic. Acta Sci Vet 2002;30:127-9.
24
Vangeel L, Houf K, Chiers K, Vercruysse J, Dherde K, Ducatelle R. Molecular based identification of Sarcocystis hominis in Belgian minced beef. J Food Prot 2007;70:1523-6.
25
Latif BM, Al-Delemi JK, Mohammed BS, Al-Bayati SM, Al-Amiry AM. Prevalence of Sarcocystis spp. in meat producing animals in Iraq. Vet Parasitol 1999;84:85-90.
26
Kamber U, Arslan MO, Gulbaz G, Tasci GT, Akca A. Identification of Sarcocystis spp. by polymerase chain reaction and microscopic examination in various beef products (minced meat, meatballs, fermented sausage). Turk J Vet Anim Sci 2018;42:1-6.
27
Claveria FG, Petersen B, Macabagdal MR, Farolan RJ, Farrol MA, Gonzalvo F, et al. A survey of bovine, bubaline and swine sarcocystosis in the Philippines. Southeast Asian J Trop Med Public Health 1997;28:173-8.
28
Woldemeskel M, Gebreab F. Prevalence of sarcocysts in livestock of northwest Ethiopia. Zentralbl Veterinarmed B 1996;43:55-8.
29
Nourollahi Fard SR, Kheirandish R, Sattari S. Prevalence and histopathological finding of thin-walled and thick-walled Sarcocysts in slaughtered cattle of Karaj abattoir, Iran. J Parasit Dis 2015;39:272-5.
30
Ghisleni G, Robba S, Germani O, Scanziani E. Identification and prevalence of Sarcocystis spp. cysts in bovine canned meat. Food Control 2006;17:691-4.
2024 ©️ Galenos Publishing House