Renal Transplant Alıcılarında Renal Microsporidiosis Prevalansı ve <em>Encephalitazoon intestinalis</em> Moleküler Karakterizasyonu
PDF
Atıf
Paylaş
Talep
Özgün Araştırma
P: 111-116
Haziran 2024

Renal Transplant Alıcılarında Renal Microsporidiosis Prevalansı ve Encephalitazoon intestinalis Moleküler Karakterizasyonu

Turkiye Parazitol Derg 2024;48(2):111-116
Bilgi mevcut değil.
Bilgi mevcut değil
Alındığı Tarih: 24.01.2024
Kabul Tarihi: 25.06.2024
PDF
Atıf
Paylaş
Talep

ÖZ

Amaç

Böbrek nakli, son dönem böbrek yetmezliği olan hastalarda en başarılı sağkalım sağlayan renal replasman tedavi seçeneğidir. Ancak böbrek nakli sonrasında uygulanan immün baskılayıcı ajanlar fırsatçı enfeksiyon riskini artırmaktadır. Microsporidialar, immün sistemi baskılanmış hastalarda ölümcül olabilen zorunlu hücre içi patojenlerdir. Bu çalışmada böbrek nakil hastalarında microsporidia prevalansının belirlenmesi ve tespit edilen türlerin moleküler karakterizasyonunun yapılması amaçlandı.

Yöntemler

Böbrek nakli hastalarında renal microsporidiosis prevalansını değerlendirmek için toplam 325 hastadan alınan idrar örnekleri Encephalitozoon spp. ve Enterocytozoon bieneusi açısından gerçek zamanlı ve nested polimeraz zincir reaksiyonu ile analiz edildi.

Bulgular

Erişkin hastalardan sadece biri (%0,4) Encephalitozoon türleri yönünden pozitif belirlendi, çocuk hastalarda ise pozitiflik saptanmadı. ITS rRNA gen bölgesi sekans analizi sonucunda tespit edilen türün Encephalitozoon intestinalis olduğu görüldü. Bu çalışma ile Türkiye’de ilk kez insanlardan izole edilen bir microsporidia türü karakterize edilerek GenBank’a kaydedildi.

Sonuç

Elde edilen epidemiyolojik sonuçlar, renal transplant hastalarında renal microsiporidiosis prevalansının çok düşük olduğunu göstermektedir. Ayrıca tespit edilen izolatın filogenetik analizi sonucunda Kayseri’de köpeklerden bildirilen izolatlarla %100 benzer olduğu görüldü. Bu çalışma microsporidiaların zoonotik bulaşma dinamikleri açısından önemli bir veri sağlamaktadır.

Anahtar Kelimeler: Renal microsporidiosis, Encephalitozoon intestinalis, zoonotik bulaş, böbrek nakli, Türkiye

References

1
Cali A, Becnel JJ, Takvorian PM. Microsporidia. In: Handbook of the Protists. Cham, Springer International Publishing; 2017.
2
Duzlu O, Yildirim A, Onder Z, Ciloglu A, Yetismis G, Inci A. Prevalence and Genotyping of Microsporidian Parasites in Dogs in Turkey: Zoonotic Concerns. J Eukaryot Microbiol. 2019; 66: 771-7.
3
Han B, Pan G, Weiss LM. Microsporidiosis in Humans. Clin Microbiol Rev. 2021; 34: e0001020.
4
Didier ES. Microsporidiosis: An emerging and opportunistic infection in humans and animals. Acta Trop. 2005; 94: 61-76.
5
Ramanan P, Pritt BS. Extraintestinal Microsporidiosis. J Clin Microbiol. 2014; 52: 3839-44.
6
Mohamed Yusoff PS, Osman E, Raja Sabudin RZA. Disseminated microsporidiosis: An underdiagnosed and emerging opportunistic disease. Malays J Pathol. 2021; 43: 9-18.
7
Gordon EJ. Patients’ decisions for treatment of end-stage renal disease and their implications for access to transplantation. Soc Sci Med. 2001; 53: 971-87.
8
Nagpal A, Pritt BS, Lorenz EC, Amer H, Nasr SH, Cornell LD, et al. Disseminated microsporidiosis in a renal transplant recipient: case report and review of the literature. Transpl Infect Dis. 2013; 15: 526-32.
9
Chaiyapak T. Common Viral Infections In Children After Kidney Transplantation. J Pediatr Acad. 2021; 43-51.
10
Latib MA, Pascoe MD, Duffield MS, Kahn D. Microsporidiosis in the graft of a renal transplant recipient. Transpl Int. 2001; 14: 274-7.
11
Kicia M, Wesolowska M, Kopacz Z, Jakuszko K, Sak B, Květonová D, et al. Prevalence and molecular characteristics of urinary and intestinal microsporidia infections in renal transplant recipients. Clin Microbiol Infect. 2016; 22: 462.e5-9.
12
Shah S, Jacob SS, Mani R, Parameswaran A, Kumar S, Annigeri RA, et al. Renal microsporidiosis in pediatric bone marrow transplant recipients: a case series. Turk Patoloji Derg. 2020; 36: 68-72.
13
Polley SD, Boadi S, Watson J, Curry A, Chiodini PL. Detection and species identification of microsporidial infections using SYBR Green real-time PCR. J Med Microbiol. 2011; 60: 459-66.
14
Katzwinkel-Wladarsch S, Lieb M, Heise W, Loscher T, Rinder H. Direct amplification and species determination of microsporidian DNA from stool specimens. Trop Med Int Health. 1996; 1: 373-8.
15
Buckholt MA, Lee JH, Tzipori S. Prevalence ofEnterocytozoon bieneusi in Swine: an 18-Month Survey at a Slaughterhouse in Massachusetts. Appl Environ Microbiol. 2002; 68: 2595-9.
16
Kearse M, Moir R, Wilson A, Stones-Havas S, Cheung M, Sturrock S, et al. Geneious Basic: An integrated and extendable desktop software platform for the organization and analysis of sequence data. Bioinformatics. 2012; 28: 1647-9.
17
Trifinopoulos J, Nguyen L-T, von Haeseler A, Minh BQ. W-IQ-TREE: a fast online phylogenetic tool for maximum likelihood analysis. Nucleic Acids Res. 2016; 44: W232-5.
18
Fishman JA. Infection in Organ Transplantation. Am J Transplant. 2017; 17: 856-79.
19
Liguory O, Sarfati C, Derouin F, Molina J-M. Evidence of DifferentEnterocytozoon bieneusi Genotypes in Patients with and without Human Immunodeficiency Virus Infection. J Clin Microbiol. 2001; 39: 2672-4.
20
Rabodonirina M, Cotte L, Radenne S, Besada E, Trepo C. Microsporidiosis and Transplantation: A Retrospective Study of 23 Cases. J Eukaryot Microbiol. 2003; 50: 583.
21
Bednarska M, Bajer A, Siński E, Wolska-Kuśnierz B, Samoliński B, Graczyk TK. Occurrence of intestinal microsporidia in immunodeficient patients in Poland. Ann Agric Environ Med. 2014; 21: 244-8.
22
Ghoshal U, Khanduja S, Pant P, Prasad KN, Dhole TN, Sharma RK, et al. Intestinal microsporidiosis in renal transplant recipients: Prevalence, predictors of occurrence and genetic characterization. Indian J Med Microbiol. 2015; 33: 357-63.
23
Çetinkaya Ü, Hamamcı B, Kaynar L, Kuk S, Şahin İ, Yazar S. Kemik iliği transplant hastalarındaEncephalitozoon intestinalis ve Enterocytozoon bieneusi varlığının IFA-MAbs yöntemiyle araştırılması [Investigation of the presence of Encephalitozoon intestinalis and Enterocytozoon bieneusi in bone marrow transplant patients by IFA-MAbs method]. Mikrobiyol Bul. 2015; 49: 432-8. Turkish.
24
Nagpal A, Pritt BS, Lorenz EC, Amer H, Nasr SH, Cornell LD, et al. Disseminated microsporidiosis in a renal transplant recipient. Transpl Infect Dis. 2002; 4: 102-7.
25
George B, Coates T, McDonald S, Russ G, Cherian S, Nolan J, et al. Disseminated microsporidiosis with Encephalitozoon species in a renal transplant recipient. Nephrology (Carlton). 2012; 17(Suppl 1): 5-8.
26
Hernández-Rodríguez OX, Alvarez-Torres O, Ofelia Uribe-Uribe N. Microsporidia Infection in a Mexican Kidney Transplant Recipient. Case Reports Nephrol. 2012; 2012: 928083.
27
Kicia M, Wesolowska M, Jakuszko K, Kopacz Z, Sak B, Květonova D, et al. Concurrent Infection of the Urinary Tract withEncephalitozoon cuniculi and Enterocytozoon bieneusi in a Renal Transplant Recipient. J Clin Microbiol. 2014; 52: 1780-2.
28
Piekarska J, Kicia M, Wesołowska M, Kopacz Ż, Gorczykowski M, Szczepankiewicz B, et al. Zoonotic microsporidia in dogs and cats in Poland. Vet Parasitol. 2017; 246: 108-11.
29
Kotkova M, Sak B, Kvetonova D, Kvac M. Latent Microsporidiosis Caused byEncephalitozoon cuniculi in Immunocompetent Hosts: A Murine Model Demonstrating the Ineffectiveness of the Immune System and Treatment with Albendazole. PLoS One. 2013; 8: e60941.
30
Galván-Díaz AL, Magnet A, Fenoy S, Henriques-Gil N, Haro M, Gordo FP, et al. Microsporidia Detection and Genotyping Study of Human PathogenicE. bieneusi in Animals from Spain. PLoS One. 2014; 9: e92289.
31
Mathis A, Weber R, Deplazes P. Zoonotic potential of the microsporidia. Clin Microbiol Rev. 2005; 18: 423-45.
32
Santín M, Fayer R. Microsporidiosis:Enterocytozoon bieneusi in domesticated and wild animals. Res Vet Sci. 2011; 90: 363-71.
33
Pirestani M, Sadraei J, Forouzandeh M. Molecular characterization and genotyping of human related microsporidia in free-ranging and captive pigeons of Tehran, Iran. Infect Genet Evol. 2013; 20: 495-9.
2024 ©️ Galenos Publishing House