Libya’daki Keçi ve Koyunların İşkembe Siliyat Faunasının Karşılaştırmalı Çalışması
PDF
Atıf
Paylaş
Talep
P: 274-279
Aralık 2021

Libya’daki Keçi ve Koyunların İşkembe Siliyat Faunasının Karşılaştırmalı Çalışması

Turkiye Parazitol Derg 2021;45(4):274-279
Bilgi mevcut değil.
Bilgi mevcut değil
Alındığı Tarih: 26.05.2021
Kabul Tarihi: 20.08.2021
Yayın Tarihi: 02.12.2021
PDF
Atıf
Paylaş
Talep

ÖZET

Amaç:

Bu çalışmanın amacı Zawiya, Libya’da bulunan keçilerin (Capra aegagrus hircus) ve koyunların (Ovis aries) işkembe siliyat faunası üzerine karşılaştırmalı bilgiler elde etmektir.

Yöntemler:

İşkembe örnekleri Zawiya, Libya’daki 16 keçi ve 17 koyundan Haziran 2016 ve Ağustos 2016 tarihleri arasında kesim işlemlerinden hemen sonra alınmıştır. İyi karışmış örnekler eşit hacimli %18,5’lik formalin ile hemen tespit edilmiştir. Örnekler laboratuvarda süzülmüş ve metil yeşili formalin salin solüsyonuyla boyanmıştır. Metil yeşili formalin salin solüsyonu nukleusları belli etmek için kullanılmış ve iskelet plaklarını belli etmek için de örneklere %2’lik Lugol’ün iyot solüsyonu eklenmiştir.

Bulgular:

Libya’daki 16 keçinin ve 17 koyunun işkembe örneklerindeki siliyat sayısı (± standart sapma) sırasıyla, 70,9±61,6×104 hücre mL-1 (minimum-maksimum değer, 4,0-187,0×104 hücre mL-1) ve 96,3±49,3×104 hücre mL-1’dir (minimum-maksimum değer, 19,5-235,0×104 hücre mL-1). Keçi ve koyun başına türlerin toplam sayısı sırasıyla, 1-17 (ortalama, 8,2±4,7) ve 1-13’tür (ortalama, 7,9±3,8). Keçilerde 10 cins, 19 tür ve 11 morfotip teşhis edilirken, buna karşın koyunlarda 9 cins, 16 tür ve 13 morfotip tespit edilmiştir. Entodinium simulans bütün keçilerde ve koyunlarda %100’lük bir oranda tespit edilmiştir. Hsiungia triciliata ve Ostracodinium gracile sadece 1 keçide (%6,3 yaygınlık), aynı şekilde Polyplastron multivesiculatum sadece 1 koyunda (%5,9 yaygınlık) gözlemlenmiştir. Genelde, Libya’daki keçi ve koyunların işkembe siliyat faunası Entodinium türlerinden oluşmaktadır (keçiler için ortalama %85,9; koyunlar için ortalama %83,9).

Sonuç:

Hsiungia triciliata, keçiler için yeni bir endosimbiyonttur. Keçilerden tespit edilen tüm türler, Libya’dan ilk kez rapor edilmiştir. Diplodinium anisacanthum, Entodinium bursa, E. ellipsoideum, E. longinucleatum, E. simulans, Isotricha prostoma, Ophryoscolex caudatus, Ostracodinium gracile ve Polyplastron multivesiculatum Libya’daki koyunlarda ilk kez tespit edilmiştir.

References

1
Solomon R, Jami E. Rumen protozoa: from background actors to featured role in microbiome research. Environ Microbiol Rep 2021; 13: 45-9. 
2
Newbold CJ, Ramos-Morales E. Review: Ruminal microbiome and microbial metabolome: effects of diet and ruminant host. Animal 2020; 14: s78-s86. 
3
Dehority BA. Protozoa of the digestive tract of herbivorous mammals. Insect Sci Appl 1986; 7: 279-96.
4
Mizrahi I. Rumen Symbioses. In: Rosenberg E, DeLong EF, Lory S, Stackebrandt E, Thompson F, editors. The Prokaryotes-Prokaryotic Biology and Symbiotic Associations. Berlin Heidelberg: Springer-Verlag; 2013. p. 533-44.
5
Dehority BA. Specificity of rumen ciliate protozoa in cattle and sheep. J Protozool 1978; 25: 509-13.
6
Franzolin R, Dehority BA. Effect of prolonged high-concentrate feeding on ruminal protozoa concentrations. J Anim Sci 1996; 74: 2803-9. 
7
Imai S. Phylogenetic taxonomy of rumen ciliate protozoa based on their morphology and distribution. J Appl Anim Res 1998; 13: 17-36.
8
Lynn DH. The ciliated protozoa: characterization, classification, and guide to the literature. Dordrecht: Springer; 2008.
9
Dogiel VA. The phylogeny of the stomach infusorians of ruminants in the light of paleontological and parasitological data. Quart. J Microscop Sci 1947; 88: 337-43.
10
Vďačný P. Evolutionary associations of endosymbiotic ciliates shed light on the timing of the marsupial-placental split. Mol Biol Evol 2018; 35: 1757-69.
11
Moon-van der Staay SY, van der Staay GW, Michalowski T, Jouany JP, Pristas P, Javorský P, et al. The symbiotic intestinal ciliates and the evolution of their hosts. Eur J Protistol 2014; 50: 166-73.
12
Dehority BA. Evaluation of subsampling and fixation procedures used for counting rumen protozoa. Appl Environ Microbiol 1984; 48: 182-5. 
13
Ogimoto K, Imai S, editors. Atlas of rumen microbiology. Tokyo: Japan Scientific Societies Press; 1981.
14
Gürelli G. Rumen ciliate fauna (Ciliophora, Protista) of Turkish domestic goats living in İzmir, Turkey. Turk J Zool 2014; 38: 136-43.
15
Gürelli G. Rumen ciliates of domestic cattle (Bos taurus taurus) in Kastamonu, Turkey, with the description of a new species. Eur J Protistol 2016; 56: 51-9. 
16
Gürelli G. Rumen ciliate fauna of domestic sheep (Ovis aries) in İzmir, Turkey and scanning electron microscopic observations. Zootaxa 2017; 4286: 545-54.
17
Gürelli G, Yürücüoğlu N. Ruminal ciliate diversity of domestic cattle in Antalya, Turkey, with special emphasis on morphology of Entodinium rostratum (Entodiniomorphida, Ophryoscolecidae). Protistol 2019; 13: 71-8.
18
Bush AO, Lafferty KD, Lotz JM, Shostak AW. Parasitology meets ecology on its own terms: Margolis et al. revisited. J Parasitol 1997; 83: 575-83. 
19
Dogiel VA. Monographie der familie Ophryoscolecidae. Arch Protistenkd 1927; 59: 1-288.
20
Dehority BA. Laboratory manual for classification and morphology of rumen ciliate protozoa. Florida: CRC Press; 1993.
21
Williams AG, Coleman GS, editors. The rumen protozoa. New York: Springer; 1992.
22
Imai S, Han SS, Cheng KJ, Kudo H. Composition of the rumen ciliate population in experimental herds of cattle and sheep in Lethbridge, Alberta, Western Canada. Can J Microbiol 1989; 35: 686-90.
23
Ito A, Imai S. Ciliated protozoa in the rumen of Holstein–Friesian cattle (Bos taurus taurus) in Hokkaido, Japan, with the description of two new species. Zool Sci 1990; 7: 449-58.
24
Gürelli G, Mohamed ARA. Ciliated Protozoan fauna in the forestomach of dromedary Camels (Camelus dromedarius) in Libya. Zootaxa 2018; 4434: 429-40. 
25
Selim HM, Imai S, el Sheik AK, Attia H, Okamoto E, Miyagawa E, et al. Rumen ciliate protozoal fauna of native sheep, friesian cattle and dromedary camel in Libya. J Vet Med Sci 1999; 61: 303-5.
26
Gürelli G, Daw AFOE. Endosymbiotic ciliated protozoan biota of dromedary camels and domestic cattle in Tunisia. Zootaxa 2020; 4859: zootaxa.4859.3.6. 
27
Ito A, Imai S, Manda M, Ogimoto K. Rumen ciliates of Tokara native goat in Kagoshima, Japan. J Vet Med Sci 1995; 57: 355-7. 
28
Gurung YB, Parajuli N, Miyazaki Y, Imai S, Kobayashi K. Rumen ciliate faunae of water buffalo (Bubalus bubalis) and goat (Capra hircus) in Nepal. J Vet Med Sci 2002; 64: 265-7. 
29
Cannas A, Pulina G. Dairy goats feeding and nutrition. Wallingford: CAB International; 2008.
30
Burritt E, Frost R. Chapter 2: Animal behaviour principles and practices. In: Launchbaugh KL, Walker JW, Daines RJ, editors. Targeted Grazing: A Natural Approach to Vegetation Management and Landscape Enhancement. Englewood: American Sheep Industry Association; 2006. p. 10-21.
31
Ito A, Imai S, Ogimoto K. Rumen ciliates of ezo deer (Cervus nippon yesoensis) with the morphological comparison with those of cattle. J Vet Med Sci 1993; 55: 93-8.
32
Hungate RE. The rumen and its microbes. New York: Academic Press; 1996.
33
Kurihara Y, Takechi T, Shibata F. Relationship between bacteria and ciliate protozoa in the rumen of sheep fed on a purified diet. J Agric Sci Camb 1978; 90: 373-81.
34
Dehority BA. Rumen ciliate fauna of Alaskan moose (Alces americana), musk-ox (Ovibos moschatus) and Dall moutain sheep (Ovis dalli). J Protozool 1974; 21: 26-32. 
35
Gürelli G, Canbulat S, Aldayarov N, Dehority BA. Rumen ciliate protozoa of domestic sheep (Ovis aries) and goat (Capra aegagrus hircus) in Kyrgyzstan. FEMS Microbiol Lett 2016; 363: fnw028. 
36
Imai S. Ciliate protozoa in the rumen of Kenyan zebu cattle, Bos taurus indicus, with the description of four new species. J Protozool 1988; 35: 130-6.
37
Guirong, Su NR, Hua ZX, Zhu S, Imai S. Rumen ciliated protozoan fauna of the yak (Bos grunniens) in China with the description of Entodinium monuo n. sp. J Eukaryot Microbiol 2000; 47: 178-82.
38
Michalowski T, Belżecki G, Kwiatkowska E, Pejak JJ. The effect of selected rumen fauna on fibrolytic enzyme activities, bacterial mass, fiber disappearance and fermentation pattern in sheep. J Anim Feed Sci 2003; 12: 45-64.
39
Lubinsky G. Studies on the evolution of Ophryoscolecidae. I. A new species of Entodinium with ‘caudatum’, ‘lobosospinosum’ and ‘dubardi’ forms and others. Can J Zool 1957; 35: 111-33.
40
Coleman GS, Laurie JI, Bailey JE. The cultivation of the rumen ciliate Entodinium bursa in the presence of Entodinium caudatum. J Gen Microbiol 1977; 101: 253-8. 
41
Wilkinson RC, Van Hoven W. Rumen ciliate fauna of the springbok (Antidorcas marsupialis) in southern Africa. Zool Afr 1976; 11: 1-22.
42
Dehority BA. Rumen ciliate protozoa in Ohio white-tailed deer (Odocoileus virginianus). J Protozool 1990; 37: 473-5.
43
Dehority BA. Rumen ciliates of the pronghorn antelope (Antilocapra americana), mule deer (Odocoileus hemionus), white-tailed deer (Odocoileus virgianus) and elk (Cervus canadensis) in the Northwestern United States. Arch Protistenkd 1995; 146: 29-36.
44
Eadie JM. The development of rumen microbial populations in lambs and calves under various conditions of management. J Gen Microbiol 1962; 29: 563-78.
45
Imai S, Katsuno M, Ogimoto K. Distribution of rumen ciliate protozoa in cattle, sheep and goat and experimental transfaunation of them. Jpn J Zootech Sci 1978; 49: 494-505.
46
Imai S, Katsuno M, Ogimoto K. Type of the pattern of the rumen ciliate composition of the domestic ruminants and the predator-prey interaction of ciliates. Jpn J Zootech Sci 1979; 50: 79-87.
47
Eadie JM. Studies on the ecology of certain rumen ciliate protozoa. J Gen Microbiol 1967; 49: 175-94. 
2024 ©️ Galenos Publishing House