Konvansiyonel Antileishmanial İlaçların Leishmania tropica’ya Karşı Hücre İçi Etkinliğinin Kantitatif Analizi: THP-1 Makrofaj-Amastigot Modelinde Translasyonel Bir Yaklaşım
PDF
Atıf
Paylaş
Talep
Özgün Araştırma
CİLT: 50 SAYI: 2
P: 54 - 61
Haziran 2026

Konvansiyonel Antileishmanial İlaçların Leishmania tropica’ya Karşı Hücre İçi Etkinliğinin Kantitatif Analizi: THP-1 Makrofaj-Amastigot Modelinde Translasyonel Bir Yaklaşım

Turkiye Parazitol Derg 2026;50(2):54-61
Bilgi mevcut değil.
Bilgi mevcut değil
Alındığı Tarih: 06.10.2025
Kabul Tarihi: 02.03.2026
Online Tarih: 15.06.2026
Yayın Tarihi: 15.06.2026
PDF
Atıf
Paylaş
Talep

ÖZ

Amaç

Enfekte THP-1 makrofajlarının kontrollü lizisiyle serbest bırakılan canlı amastigotların uygun in vitro koşullarda promastigot forma dönüşmesine dayanan parazit kurtarma ve dönüştürme testi (PRTA) uygulanarak, dönüşen promastigotların luminometrik analizi ile konvansiyonel antileishmanial ilaçların Leishmania tropica’ya (L. tropica) karşı hücre içi duyarlılığının kantitatif olarak değerlendirilmesi amaçlanmıştır.

Yöntemler

L. tropica (MHOM/TR/2007/CBU001) promastigotları Novy-MacNeal-Nicolle ve Schneider’s insect medium’da, THP-1 hücreleri ise RPMI-1640’ta kültüre edildi. PMA ile farklılaştırılan THP-1 makrofajları promastigotlarla enfekte edilerek makrofaj-amastigot modeli oluşturuldu. Hücre içi ilaç duyarlılığı, beş konvansiyonel ajan (amfoterisin B, miltefosin, pentamidin, sodyum stiboglukonat ve meglumin antimonat) için, dönüşen promastigotların (PRTA) luminometrik analizi (CellTiter-Glo®) ile kantitatif olarak belirlendi. Giemsa boyalı preparatlarda hücre içi amastigotların mikroskobik sayımı ise doğrulama yöntemi olarak kullanıldı. İnhibitör konsantrasyonu 50 (IC50) değerleri doz-yanıt eğrilerinden hesaplandı; yöntemler t-testi ve Pearson korelasyon analiziyle karşılaştırıldı.

Bulgular

Amfoterisin B ve pentamidin en yüksek etkinliği, miltefosin orta düzeyde, antimon bileşikleri ise görece düşük etkinlik göstermiştir. Luminometrik ve mikroskobik yöntemlerle elde edilen IC50 değerleri arasında yüksek düzeyde uyum saptandı; eşleştirilmiş t-testi fark olmadığını (t=0,2172, p=0,8387), Pearson analizi ise güçlü pozitif korelasyonu (r=0,9944, p=0,005) ortaya koydu.

Sonuç

Dönüşen promastigotların luminometrik analizi, hücre içi amastigotların mikroskobik sayımı ile karşılaştırılabilir doğruluk sunarken; zaman, iş gücü ve kaynak açısından daha verimli bir yöntemdir. Canlı parazitlerin metabolik aktivitesine dayalı fonksiyonel ölçüm yapabilmesi, yüksek örnekleme kapasitesi, otomasyona uyumluluğu ve düşük operatör bağımlılığı başlıca avantajlarıdır. Bu yönleriyle yöntem, standardize yapısı sayesinde L. tropica gibi türe özgü modellerde klinik öngörü açısından güvenilir, translasyonel araştırmalara uygun ve ölçeklenebilir bir analiz platformu olarak önerilmektedir.

Anahtar Kelimeler:
Leishmania tropica, hücre içi ilaç duyarlılığı, THP-1, parazit kurtarma ve dönüştürme testi, translasyonel tıp

Kaynaklar

1
de Vries HJC, Schallig HD. Cutaneous Leishmaniasis: a 2022 updated narrative review into diagnosis and management developments. Am J Clin Dermatol. 2022; 23: 823-40.
2
World Health Organization. Leishmaniasis [Internet]. Geneva: World Health Organization; 2020. Available from: https://www.who.int/health-topics/leishmaniasis#tab=tab_1.
3
Registre C, Silva LM, Registre F, Soares RDOA, Rubio KTS, Carneiro SP, et al. Targeting Leishmania promastigotes and amastigotes forms through amino acids and peptides: a promising therapeutic strategy. ACS Infect Dis. 2024; 10: 2467-84.
4
Zhang H, Yan R, Liu Y, Yu M, He Z, Xiao J, et al. Progress in antileishmanial drugs: mechanisms, challenges, and prospects. PLoS Negl Trop Dis. 2025; 19: e0012735.
5
Sereno D, Cordeiro da Silva A, Mathieu-Daude F, Ouaissi A. Advances and perspectives in Leishmania cell based drug-screening procedures. Parasitol Int. 2007; 56: 3-7.
6
De Muylder G, Ang KK, Chen S, Arkin MR, Engel JC, McKerrow JH. A screen against Leishmania intracellular amastigotes: comparison to a promastigote screen and identification of a host cell-specific hit. PLoS Negl Trop Dis. 2011; 5: e1253.
7
Bilbao-Ramos P, Sifontes-Rodríguez S, Dea-Ayuela MA, Bolás-Fernández F. A fluorometric method for evaluation of pharmacological activity against intracellular Leishmania amastigotes. J Microbiol Methods. 2012; 89: 8-11.
8
Lomakina GY, Ugarova NN. Bioluminescent test systems based on firefly luciferase for studying stress effects on living cells. Biophys Rev. 2022; 14: 887-92.
9
Yıldırım A, Aksoy T, Kayalar H, Balcıoğlu İC. Semen Cannabis and Oleum Hyperici: antileishmanial activity against Leishmania tropica promastigotes and intracellular amastigotes. Parasitol Int. 2024; 103: 102950.
10
Aksoy T, Kilimcioğlu AA. Thymol’s antileishmanial activity and its impact on host cytokine profiles: in vitro and ex vivo studies on Leishmania tropica. Parasitol Int. 2026; 110: 103139.
11
Hendrickx S, Van Bockstal L, Caljon G, Maes L. In-depth comparison of cell-based methodological approaches to determine drug susceptibility of visceral Leishmania isolates. PLoS Negl Trop Dis. 2019; 13: e0007885.
12
Jain SK, Sahu R, Walker LA, Tekwani BL. A parasite rescue and transformation assay for antileishmanial screening against intracellular Leishmania donovani amastigotes in THP1 human acute monocytic leukemia cell line. J Vis Exp. 2012: 4054.
13
Croft SL. Monitoring drug resistance in leishmaniasis. Trop Med Int Health. 2001; 6: 899-905.
14
Azim M, Khan SA, Ullah S, Ullah S, Anjum SI. Therapeutic advances in the topical treatment of cutaneous leishmaniasis: a review. PLoS Negl Trop Dis. 2021; 15: e0009099.
15
Ponte-Sucre A, Gamarro F, Dujardin JC, Barrett MP, López-Vélez R, García-Hernández R, et al. Drug resistance and treatment failure in leishmaniasis: a 21st century challenge. PLoS Negl Trop Dis. 2017; 11: e0006052.
16
Santos GA, Sousa JM, Aguiar AHBM, Torres KCS, Coelho AJS, Ferreira AL, et al. Systematic review of treatment failure and clinical relapses in leishmaniasis from a multifactorial perspective: clinical aspects, factors associated with the parasite and host. Trop Med Infect Dis. 2023; 8: 430.
17
Maia C, Rolão N, Nunes M, Gonçalves L, Campino L. Infectivity of five different types of macrophages by Leishmania infantum. Acta Trop. 2007; 103: 150-5.
18
Vermeersch M, da Luz RI, Toté K, Timmermans JP, Cos P, Maes L. In vitro susceptibilities of Leishmania donovani promastigote and amastigote stages to antileishmanial reference drugs: practical relevance of stage-specific differences. Antimicrob Agents Chemother. 2009; 53: 3855-9.
19
Zabala-Peñafiel A, Dias-Lopes G, Cysne-Finkelstein L, Conceição-Silva F, Miranda LFC, Fagundes A, et al. Serine proteases profiles of Leishmania (Viannia) braziliensis clinical isolates with distinct susceptibilities to antimony. Sci Rep. 2021; 11: 14234.
20
Kolodziej H. Antimicrobial, antiviral and immunomodulatory activity studies of Pelargonium sidoides (EPs® 7630) in the context of health promotion. Pharmaceuticals (Basel). 2011; 4: 1295-314.
21
Seifert K, Escobar P, Croft SL. In vitro activity of anti-leishmanial drugs against Leishmania donovani is host cell dependent. J Antimicrob Chemother. 2010; 65: 508-11.
22
Mohd Yasin ZN, Mohd Idrus FN, Hoe CH, Yvonne-Tee GB. Macrophage polarization in THP-1 cell line and primary monocytes: a systematic review. Differentiation. 2022; 128: 67-82.
23
Neal RA, Croft SL. An in-vitro system for determining the activity of compounds against the intracellular amastigote form of Leishmania donovani. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 1984; 14: 463-75.
24
Di Giorgio C, Ridoux O, Delmas F, Azas N, Gasquet M, Timon-David P. Flow cytometric detection of Leishmania parasites in human monocyte-derived macrophages: application to antileishmanial-drug testing. Antimicrob Agents Chemother. 2000; 44: 3074-8.
25
Chan MM, Bulinski JC, Chang KP, Fong D. A microplate assay for Leishmania amazonensis promastigotes expressing multimeric green fluorescent protein. Parasitol Res. 2003; 89: 266-71.
26
Riss TL, Moravec RA, Niles AL, Duellman S, Benink HA, Worzella TJ, et al. Cell viability assays. 2013 May 1 [updated 2016 Jul 1]. In: Markossian S, Grossman A, Baskir H, Arkin M, Auld D, Austin C, editors. Assay Guidance Manual [Internet]. Bethesda (MD): Eli Lilly & Company and the National Center for Advancing Translational Sciences; 2004.
27
Rasti S, Ghorbanzadeh B, Kheirandish F, Mousavi SG, Pirozmand A, Hooshyar H, et al. Comparison of molecular, microscopic, and culture methods for diagnosis of cutaneous leishmaniasis. J Clin Lab Anal. 2016; 30: 610-5.
28
Badirzadeh A, Heidari-Kharaji M, Fallah-Omrani V, Dabiri H, Araghi A, Salimi Chirani A. Antileishmanial activity of Urtica dioica extract against zoonotic cutaneous leishmaniasis. PLoS Negl Trop Dis. 2020; 14: e0007843.
29
Kimcharoensuk S, Leelayoova S, Mungthin M, Nawattanapaibool N, Tan-Ariya P, Siripattanapipong S. In vitro drug susceptibility using a parasite-rescue and transformation assay of Leishmania (Mundinia) martiniquensis and Leishmania (Mundinia) orientalis amastigotes against antileishmanial drugs. Acta Trop. 2024; 249: 107081.
30
Kumar V, Ghosh S, Roy K, Pal C, Singh S. Deletion of glutamine synthetase gene disrupts the survivability and infectivity of Leishmania donovani. Front Cell Infect Microbiol. 2021; 11: 622266.
31
Soares SAE, Marques AMS, Carmo-Neto JRD, Gomes CM, Matos GG, Oliveira MAP. Comparison of the methods fixation and staining of infected macrophages with recovery of promastigotes in culture to evaluate phagocytosis and amastigote proliferation of Leishmania sp. in vitro. Acta Parasitol. 2025; 70: 50.
32
Kloehn J, Saunders EC, O’Callaghan S, Dagley MJ, McConville MJ. Characterization of metabolically quiescent Leishmania parasites in murine lesions using heavy water labeling. PLoS Pathog. 2015; 11: e1004683.