İnsan Naso-pharyngeal Myiasis’ine Neden Olan <i>Oestrus ovis</i> Larvalarının CO1 Barkod Sekanslarına Göre Moleküler Karakterizasyonu ve Filogenetik Analizi
PDF
Atıf
Paylaş
Talep
P: 43-47
Mart 2020

İnsan Naso-pharyngeal Myiasis’ine Neden Olan Oestrus ovis Larvalarının CO1 Barkod Sekanslarına Göre Moleküler Karakterizasyonu ve Filogenetik Analizi

Turkiye Parazitol Derg 2020;44(1):43-47
Bilgi mevcut değil.
Bilgi mevcut değil
Alındığı Tarih: 02.03.2020
Kabul Tarihi: 05.03.2020
Yayın Tarihi: 20.03.2020
PDF
Atıf
Paylaş
Talep

ÖZET

Amaç:

Bu çalışmada, naso-pharyngeal myiasis ile enfekte bir insandan elde edilmiş bot sineği larvalarının identifikasyonu ve moleküler karakterizasyonu amaçlanmıştır.

Yöntemler:

Adana bölgesinde naso-pharyngeal myiasis enfeksiyonu olan 49 yaşındaki bir kadından elde edilen sekiz adet bot sineği larvası çalışmanın materyalini oluşturmuştur. Larvaların teşhis anahtarlarına göre morfolojik teşhisleri yapılmıştır. Larva örneklerinin genomik DNA ekstraktlarında barkod CO1 geni amplifiye edilmiştir. CO1 sekanslarında haplotip ve genetik farklılık analizleri yapılmış ve ilişkileri göstermek için filogenetik ağaç oluşturulmuştur.

Bulgular:

Morfolojik özelliklerine göre tüm bot sineği larvaları O. ovis’in ikinci dönem larvası olarak teşhis edilmiştir. İzolatların CO1 sekansları arasında polimorfizm belirlenmemiş olup bu sonuç O. ovis için yeni bir haplotipin varlığını ortaya çıkarmıştır. Çalışmada yeni karakterize edilen haplotip Bosna-Hersek, Hırvatistan, Brezilya ve İran’dan rapor edilmiş O. ovis haplotipleriyle ortalama %99,5 identiklik göstererek kümelenme göstermiştir. Oestridae alt aileleri arasındaki interspesifik genetik farklılıklar %19,8-%30,8 olarak belirlenmiştir.

Sonuç:

Bu çalışma Türkiye’de rastlantısal bir insan konakta belirlenen O. ovis larvaları üzerine CO1 barkod sekansları temelinde ilk moleküler karakterizasyon verilerini sağlamıştır.

References

1
Zumpt F. Myiasis in Man and Animals in the Old-world Ed. London: Butterworth, 1965.
2
Scholl PJ, Colwell DD, Cepeda-Palacios R. Myiasis (Muscoidea, Oestroidea). In: Mullen GR, Durden LA, editors. Medical and Veterinary Entomology. London: Academic Press; 2019. p.383-419.
3
Colwell DD. Bot flies and warble flies (Order Diptera: Family Oestridae). In: Samuel WM, Pybus MJ, Kocan AA, editors. Parasitic Diseases of Wild Mammals, London: Manson Publishing/The Veterinary Press; 2001. p.46-71.
4
Panadero-Fontán R, Otranto D. Arthropods affecting the human eye. Vet Parasitol. 2015;208:84-93.
5
Gokcen A, Sevgili M. Prevalence and larval burden of Oestrus ovis in Awassi sheep from Sanliurfa region of Turkey. Indian Vet J .2004;81:1168-1169.
6
Uslu U, Dik B. Prevalence and intensity of Oestrus ovis in Akkaraman sheep in the Konya region of Turkey. Med Vet Entomol. 2006;20:347-349.
7
Arslan MO, Kara M, Gicik Y. Epidemiology of Oestrus ovis infestations in sheep in Kars province of north-eastern Turkey. Trop Anim Health Prod. 2009;41:299-305.
8
Yar K, Özcan AA, Koltaş İS. External ophthalmomyiasis: case reports. Turkiye Parazitol Derg. 2011;35:224-226.
9
Akdemir MO, Ozen S. External ophthalmomyiasis caused by Oestrus ovis misdiagnosed as bacterial conjunctivitis. Trop Doct. 2013;43:120-123.
10
Calışkan S, Ugurbaş SC, Sağdık M. Ophthalmomyiasis externa: three cases caused by Oestrus ovis larvae in Turkey. Trop Doct. 2014;44:230-232.
11
Istek Ş. Ophthalmomyiasis externa from Hakkari, the south east border of Turkey. BMJ Case Rep. 2014;bcr2013201226.
12
Özyol P, Özyol E, Sankur F. External ophthalmomyiasis: a case series and review of ophthalmomyiasis in Turkey. Int Ophthalmol. 2016;36:887-891.
13
Hebert PD, Penton EH, Burns JM, Janzen DH, Hallwachs W. Ten species in one: DNA barcoding reveals cryptic species in the neotropical skipper butterfly Astraptes fulgerator. Proc. Natl Acad Sci USA. 2004;41:14812-14817.
14
Hebert PD, Stoeckle MY, Zemlak TS, Francis CM, Identification of birds through DNA Barcodes. PLoS Biol. 2004;2:e312.
15
Hebert PD, Gregory TR. The promise of DNA barcoding for taxonomy. Syst Biol. 2005;54:852-859.
16
Moreno V, Romero-Fernández I, Marchal JA, Beltrán M, Granados JE, Habela MA, et al. Molecular characterization of bot flies, Oestrus spp. (Diptera, Oestridae), from domestic and wild Bovidae hosts.Vet Parasitol. 2015;212:473-477.
17
Cavallero S, Pombi M, Perrone V, Milardi GL, D’Amelio S, Giuliani C, et al. Gasterophilus intestinalis (Diptera: Oestridae) in the diaphragmatic muscle: An unusual finding. Vet Parasitol. 2017;237:117-121.
18
Rakhshandehroo E, Razavi SM, Farzaneh R, Esmailnejad A, Asadpour M, Shams S. Phylogenetic analysis of goat warble fly (Przhevalskiana silenus) based on mitochondrial COI gene. J Parasit Dis. 2019;43:304-307.
19
Li XY, Pape T, Zhang D. Gasterophilus flavipes (Oestridae: Gasterophilinae): A horse stomach bot fly brought back from oblivion with morphological and molecular evidence. PLoS One. 2019;14:e0220820.
20
Folmer O, Black M, Hoeh W, Lutz R, Vrijenhoek R. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Mar Biotechnol (NY). 1994;3:294-299.
21
Edgar RC. MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput. Nucleic Acids Res. 2004;32:1792-1797.
22
Librado P, Rozas J. DnaSP v5: a software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics. 2009;25:1451-1452.
23
Kumar S, Stecher G, Tamura K. MEGA7: Molecular evolutionary genetics analysis version 7.0 for bigger datasets. Mol Biol Evol. 2016;33:1870-1874.
24
Kimura M. A simple method for estimating evolutionary rates of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. J Mol Evol. 1980;16:111-120.
25
Posada D. jModelTest: phylogenetic model averaging. Mol Biol Evol. 2008;25:1253-1256.
26
Guindon S, Gascuel O. A simple, fast, and accurate algorithm to estimate large phylogenies by maximum likelihood. Syst Biol. 2003;52:696-704.
27
Verstrynge K, Foets B. External ophthalmomyiasis: a case report. Bull Soc Belge Ophtalmol. 2004;67-71.
28
Yaghoobi R, Tirgari S, Sina N. Human auricular myiasis caused by Lucilia sericata: clinical and parasitological considerations. Acta Med Iran. 2005;43:155-157.
29
Akdemir MO, Ozen S. External ophthalmomyiasis caused by Oestrus ovis misdiagnosed as bacterial conjunctivitis. Trop Doct. 2013;43:120-123.
30
Najjari M, Shafiei R, Fakoorziba MR. Nosocomial myiasis with Lucilia sericata (Diptera: Calliphoridae) in an ICU patient in Mashhad, Northeastern of Iran. Arch Iran Med. 2014;17:523-525.
31
Alizadeh M, Mowlavi G, Kargar F, Nateghpour M, Akbarzadeh K, Hajenorouzali-Tehrani M. A review of myiasis in Iran and a new nosocomial case from Tehran Iran. J Arthropod Borne Dis. 2014;8:124-131.
32
Hazratian T, Tagizadeh A, Chaichi M, Abbasi M. Pharyngeal Myiasis Caused by Sheep Botfly, Oestrus ovis (Diptera: Oestridae) Larva, Tabriz, East Azarbaijan Province, Iran: a Case Report. J Arthropod Borne Dis. 2017;11:166-170.
33
Fries FN, Pattmöller M, Seitz B, Berger F, Kampen H, Szentmáry N, et al. Ophthalmomyiasis externa due to Oestrus ovis in a traveller returning from Greece. Travel Med Infect Dis. 2018;23:101-102.
34
Masoodi M, Hosseini K. The respiratory and allergic manifestations of human myiasis caused by larvae of the sheep bot fly (Oestrus ovis): A report of 33 pharyngeal cases from southern Iran. Ann Trop Med Parasitol. 2003;97:75-81.
35
Hoyer P, Williams RR, Lopez M, Cabada MM. Human nasal myiasis caused by Oestrus ovis in the highlands of Cusco, Peru: report of a case and review of the literature. Case Rep Infect Dis. 2016;2456735.
36
White ZL, Chu MW, Hood RJ. Nasal myiasis: A case report. Ear Nose Throat J. 2015;94:E24-25.
37
Otranto D, Traversa D, Guida B, Tarsitano E, Fiorente P, Stevens JR. Molecular characterization of the mitochondrial cytochrome oxidase I (COI) gene of Oestridae larvae causing obligate myiasis. Med Vet Entomol. 2003;17:307-315.
2024 ©️ Galenos Publishing House